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invention
Fédération de Russie Patent RU2086101
MÉTHODE DE CROISSANCE oyster
Nom de l'inventeur:. Kovalev VS; NS Manukovsky.; Rygalov VE
Le nom du titulaire du brevet: Institut de biophysique de l'Académie des sciences de Russie
Adresse de correspondance:
Date de début du brevet: 25.11.1994
Utilisation: l'agriculture, en particulier la culture des champignons comestibles. Le procédé consiste en la préparation du substrat, remplissant les étapes récipients de culture et en plaçant les récipients dans une grande capacité de sorte que le substrat mycélium neproroschenny une cuve en contact avec le substrat mycélien pré-germées d'un autre navire. La culture est effectuée jusqu'à ce que le substrat de germination mycélienne tous les navires, alors tous les récipients remplis de substrat pour ajuster le volume total des maintenue jusqu'à ce que le substrat de surcroissance complet, et après le retrait de la partie de grande capacité vasculaire envoyé à la chambre de fructification, et une partie envoyée pour être utilisée comme inoculum dans une technique ordinaire cycle.
DESCRIPTION DE L'INVENTION
L'invention concerne l' agriculture, en particulier pour la culture de l' huître.
Il existe une méthode de culture des pleurotes sur des substrats stérilisés dans des conditions aseptiques [1] Les inconvénients de la méthode comprennent la complexité de sa mise en œuvre et les coûts de production élevés associés à la nécessité d'acheter et de l'entretien du matériel de traitement coûteux. Par conséquent, la méthode [1] et d'autres méthodes de culture d'huîtres dans des conditions stériles ne sont pas largement utilisé dans la culture de champignons commerciale [2]
La culture intensive des pleurotes dans des conditions non stériles peut éliminer ces inconvénients, cependant, dans ce cas, il y a un autre problème: la prolifération des bactéries concurrentes dans le substrat et le moule.
soutenir la compétitivité de l'huître en créant une des conditions de croissance sélective par traitement préliminaire du substrat par des micro-organismes de protection [3, 4], la préparation du substrat multicomposant [5] additifs dans le substrat bénomyl [6] la préparation "Custos" et l'application des cultures agressives à croissance rapide huîtres [7] Difficultés la mise en œuvre de l'élevage intensif de pleurotes par les méthodes [2-7] sont associés à la nécessité d'élargir ou l'achat de «savoir-faire» et l'utilisation de médicaments rares bénomyl et «Custos». Les sujets de "savoir-faire" sont des souches de micro-organismes de protection [3, 4], la composition des substrats multicomposants [5] et l'huître de culture [7] En outre, il est connu que l'utilisation à long terme Ben et le médicament "Custos", ainsi que d'autres pesticides, perdent leur efficacité.
D'autres possibilités d'accroître la compétitivité basée sur la capacité de l'huître et d'autres champignons comestibles au développement d'une quantité importante du substrat pour supprimer l'activité des micro-organismes concurrents colonisent la capacité restante du substrat.
Il est connu, par exemple, que si le champignon shiitake colonise 85% du volume du substrat, les micro-organismes concurrents ne sont pas capables d'arrêter la colonisation des 15% restants du volume de substrat de [8] Dans la pratique, cette capacité champignons comestibles mis en oeuvre par l'utilisation de grandes quantités de semences.
procédé connu pour la culture de champignons comestibles dans un substrat stérilisé qui est inoculé sur la totalité du volume d'inoculum. Au moment de remplir les récipients de culture neproroschenny inoculés substrat alternent avec des couches de substrat pré-germée [9] Une telle méthode de culture est réalisée sur un substrat pasteurisé [10] et des couches de champignons au moment de remplir les récipients de culture sont formés par le mycélium cultivé sur des grains [11] des difficultés dans la mise en œuvre des méthodes [ 9-11] lié à la nécessité d'acquérir une grande quantité de matériel de semence ou d'une étape de traitement supplémentaire pour substrat pré-germination dans des conditions stériles.
Le plus proche de la méthode proposée est une combinaison de caractéristiques d'un procédé de champignons comestibles de croissance [12] dans une culture des sacs qui remplissent le substrat nutritif. Les sacs (5) disposé à l'intérieur du grand récipient (1). sous forme de navire déterminé par le corps rigide (4). col du récipient (3) fermé par un couvercle (2) avec une poignée (1). Après stérilisation, le récipient par le goulot (3) supporte la feuille de dessus des sacs inoculés. Mycélium se prolonge frontalement le long du substrat à partir de la couche supérieure à la couche inférieure de sacs à travers des ouvertures formées sur les surfaces supérieures et inférieures des poches. Après la germination, le substrat est retiré des sacs et de grande capacité sont envoyés à la fructification de la caméra. Les inconvénients de la méthode [12], ainsi que d'autres méthodes de culture de pleurotes dans des conditions aseptiques, sont le coût élevé de la production et de la difficulté de mise en oeuvre du procédé dans un champignon industrielle croissante, en raison de la nécessité d'acheter et utiliser un équipement coûteux pour stériliser le substrat et le maintien de conditions aseptiques au cours de la croissance. Une autre méthode d'inconvénient [2] est un mycelium de substrat germination longue due à la propagation dans un seul sens, comme représenté sur la Fig. 1 flèches.
Ainsi, les difficultés rencontrées dans la mise en œuvre à l'élevage intensif de l'huître en raison de la nécessité d'acheter et d'exploiter des équipements coûteux de fabrication [1, 12] la divulgation ou l'achat de "savoir-faire" [3-5, 7] l'utilisation de médicaments rares [6, 7] la consommation de grandes quantités d'inoculum ( 9-11] longue période de culture [12] Dans le présent procédé les tâches suivantes pour éliminer les inconvénients de l'art antérieur [12]
le développement du cycle technologique de culture des pleurotes en utilisant le même équipement de culture de prototype, mais dans des conditions non stériles;
raccourcissement du substrat de germination.
Conformément à ce qui est établi dans le champignon situation technique et économique croissante [2] une solution à ces problèmes devrait conduire à des coûts de production et, par conséquent, d'étendre l'utilisation de la méthode dans un champignon industriel en pleine croissance.
Il convient de noter que les conditions techniques et économiques supplémentaires résultant dans la résolution des problèmes. Cette condition se produit étant donné le fait que la conversion des conditions de croissance stériles aux conditions non stériles ne fait aucun doute du point de vue technique et économique et cette transition peut être effectuée par des méthodes connues, par exemple lors de la préparation d'un aérobie substrat de manière [3] ou poluanaerobnoy [7] la fermentation.
Par conséquent, une condition supplémentaire pour résoudre les problèmes est de réaliser les avantages de la méthode selon les indicateurs techniques et économiques, non seulement à l'égard d'un prototype, mais aussi sur les moyens [2-7] Par conséquent, le changement technologique des conditions de croissance stériles dans le prototype à des conditions non stériles dans le présent procédé est réalisé par inoculation et le substrat de germination technologie d'origine.
En tenant compte de la situation technique et économique pour la culture des champignons [2] Le résultat technique obtenu par la méthode proposée par comparaison avec l'art antérieur est le suivant:
pas besoin de stériliser le substrat et le maintien des conditions aseptiques pour la culture des pleurotes, ce qui devrait conduire à des coûts de production plus faibles et d'améliorer la capacité de la méthode dans une culture de champignon industriel,
raccourcit le substrat de germination, en reliant les récipients de culture neproroschennym et le substrat pré-germées dans un grand récipient, afin de permettre la propagation du mycélium dans plusieurs directions.
Le problème est résolu de la manière suivante. Le substrat est préparé par tous les moyens disponibles, comme aérobie [3, 4] ou poluanaerobnoy [6, 7] de la fermentation. Contrairement aux procédés connus de préparation du substrat l'utilisation de micro-organismes de protection spéciaux [3, 4], bénomyl [6] et une préparation "Custos" [7] est pas nécessaire. La fermentation est effectuée au détriment de la microflore spontanée. Application de la culture de l'huître, spécialement choisi pour se développer sur le substrat après fermentation poluanaerobnoy [7] et est pas obligatoire.
les navires de culture complètement substrat germée rempli est placé dans un grand récipient en contact étroit avec les navires, dont le volume est rempli substrat partiellement neproroschennym. Ensemencement substrat neproroschennogo à travers des trous dans les parois des vaisseaux adjacents.
La disposition des récipients avec des germes et neproroschennym substrat dans des conteneurs en vrac est réalisé de telle façon à assurer la distribution du mycélium dans plusieurs directions. Emplacement possible des vaisseaux avec des germes et substrat neproroschennym et la direction de propagation de mycélium sont présentés dans la figure. 2, 3. La forme de la grande capacité dépend du plan d'arrangement mutuel des navires. Par exemple, les options pour la grande 2b des capacités est un support ayant une forme de coupe en coupe transversale. Le substrat n'a pas été rempli volume administré récipients de culture d'insertion, dans lequel le substrat est maintenu à une position prédéterminée. substrat Germées désigné hachures et neproroschenny - longitudinal et transversal. Indications prolifération des mycélium sont représentés par des flèches. conteneurs de culture comme dans l'art antérieur [12] peut être sous la forme de sacs mycélium matériau perméable. La grande capacité et, dans ce mode de réalisation a une forme de sac et les inserts ne sont pas nécessaires.
Après la germination, la première partie de substrat est enlevé et inserts sont remplis dans une culture de substrat conteneurs pleins. récipients de culture avec substrat pré-germée indiqué sur la figure. 2 hachurée est utilisé dans la germination de la seconde portion du substrat ou de la fructification envoyé à la caméra. Bourgeonnement une seconde partie du substrat est effectuée en plaçant les récipients de culture dans des récipients en vrac. La disposition des vaisseaux est réalisée de telle façon à assurer la distribution de mycélium dans au moins deux directions. Un navire bourgeonnement options de mise à la deuxième partie du substrat représenté sur la Fig. 3.
Les arguments en faveur du substrat de germination du lot sont les faits suivants:
une partie du substrat colonisé par des huîtres plus rapidement que le substrat dans les récipients de culture entier, et donc des micro-organismes concurrents ont moins de temps pour la reproduction;
par analogie avec [8] les gains d'huîtres plus de possibilités pour inhiber les micro-organismes concurrents, si réduire neproroschennogo substrat par rapport à la quantité de substrat germée.
Après la germination, la deuxième partie du substrat, une partie du nombre total des navires utilisés pour envoyer chambre de fructification, et l'autre partie est utilisée pour l'inoculation et à la germination du substrat de la manière décrite ci-dessus dans le prochain cycle de travail.
rendements ou taux de croissance du mycélium avec la répétition répétée du cycle de traitement réduits indique la nécessité d'inoculum supplémentaire. A cet effet, le fond du récipient avant de remplir le substrat et l'emplacement des grands conteneurs placés sporophores d'huîtres broyées mycélium et cultivées sur des grains, et le couvercle inoculant partie supplémentaire du substrat.
La méthode proposée est différent du prototype par les caractéristiques suivantes:
une première partie du substrat ne remplit pas la totalité du volume des récipients de culture, dans le cadre de leur volume;
substrat nutritif inoculé est effectuée non pas en faisant des spores par le col de grande capacité, et en plaçant dans la culture des navires de grande capacité avec substrat neproroschennym et pré-germés;
remplir des récipients de culture de substrat est réalisée en mode plein écran après que la partie antérieure de la germination du substrat et l'extraction des récipients de culture de grande capacité;
l'inoculation et la germination de la partie postérieure du substrat est effectuée en plaçant les récipients de culture dans un grand récipient;
placement et de la culture d'agencement des conteneurs dans une grande capacité est réalisée de manière à assurer la distribution de mycélium dans non pas un mais plusieurs directions;
la distribution de mycélium dans plusieurs directions fournies par les perforations rendant non seulement sur les récipients latéraux supérieur et inférieur de la culture, et sur toute leur surface;
après substrat de germination dans des récipients de culture complets ne sont pas tous envoyé aux récipients de culture chambre fructification, et certains d'entre eux pour inoculer le substrat dans le cycle de traitement suivant;
la méthode proposée est un cycle technologique fermé dans lequel la reproduction de l'inoculum, inoculation et substrat de germination ne sont pas des opérations distinctes et indépendantes, et sont le résultat de la mise en œuvre des opérations et des techniques de fabrication proposées.
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Fig. La figure 1 montre une disposition de sacs de culture en grande capacité du prototype; Fig. 2 options d'hébergement culture des navires de choux et de substrat neproroschennym dans des conteneurs en vrac; Fig. 3 navires de culture de mise en page dans l'inoculation et le substrat de germination dans la cage; Fig. 4 - mise en page des navires de culture et les germes inoculés neproroschennym substrat dans un grand récipient, illustrant un mode de réalisation spécifique de la méthode proposée; Fig. 5 pré-germination substrat de circuit de traitement pour démarrer le cycle de traitement de la culture de pleurotes; Fig. 6 diagramme du cycle technologique de la culture de pleurotes. |
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Un exemple d'un procédé de mise en oeuvre spécifique
récipients de culture sont récipient cubique avec une face ouverte ayant une taille de 150 mm des bords. Chacun des navires de paroi présentent des trous de 10 mm de diamètre. Les trous sont disposés selon un motif en damier. distance entre les centres des trous adjacents est de 17 mm. L'emplacement des trous par rapport à chaque paroi de tous les vaisseaux sanguins est la même, en raison de la nécessité de combiner des trous vaisseaux adjacents quand ils sont placés dans un grand récipient. En plus des trous d'un diamètre de 10 mm dans le centre de chaque paroi du récipient est réalisée par un trou d'un diamètre de 24 mm pour sortir des fructifications.
La grande capacité d'un cube avec une face ouverte, le couvercle de montage. Les dimensions de conteneurs internes 300 x 300 x 300 mm. Le récipient est placé 8 récipients de culture.
La collerette a la forme d'un parallélépipède. les dimensions intérieures de la cage 150 x 150 x 1055 mm. Les faces d'extrémité de la cage ouverte et peut être couvercles fermés. Selon la ligne médiane de chacune des quatre parois de la cage est faite à 7 trous pour sortir les fructifications. Diamètre des trous est de 24 mm entraxe est de 150 mm. La cage est placée 7 navires de culture.
L'insert a une forme parallélépipédique avec des dimensions de 140 x 140 x 97 mm. Introduit dans le récipient de culture insert occupe 2/3 de son volume interne.
huîtres croissance réalisée comme suit
Étape 1. Germination substrat pour l'inoculation (Fig. 5).
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La paille de blé est broyé à une granulométrie de 3-10 mm. Une formation complémentaire est réalisée la paille méthode poluanaerobnoy de fermentation [6, 7] par immersion de la paille dans l'eau pendant 15 jours. Contrairement aux méthodes connues [6, 7] Ben et le médicament "custode" ne sont pas utilisées dans la fermentation. Au bout de 15 jours. la paille est retirée de l'eau et pressée de telle sorte que sa teneur en humidité est de 70 à 75% Après cette période, tous les grands navires est retirée des conteneurs. Chaque insert amovible du récipient et remplir le volume restant de la paille préparée. Ensuite, tous les récipients 48 sont placés dans la cage 8 à chacun des 6 navires. L'arrangement mutuel des vaisseaux dans la cage représentée sur la figure. 3. paille dans la surface supérieure des navires, placé dans la cage, recouverte d'huître mycélium cultivé sur grain de blé. Chaque récipient est placé au-dessus de 50 g de mycélium. Cage fermée des deux côtés avec des couvertures. Les ouvertures dans le diamètre cage 24 mm fermés ronde inserts pour empêcher la paille éruption. La germination de la paille a été effectuée pendant 10 jours. Après cette période, les récipients sont retirés des cages et utilisées pour l'inoculation du substrat au cours du cycle technologique. |
Étape 2. Le cycle de travail de substrat de germination et de la préparation de l'inoculum (fig. 6).
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Préparé à la 1ère étape de récipients de culture 48 de paille germée 24 est placé dans de grands récipients sur le récipient 2 dans chaque récipient. En outre, chaque récipient 6 est placé sur les récipients remplis de la paille disposé 1/3 du volume. La position relative des navires avec des germes et neproroschennoy paille dans un grand récipient représenté sur la Fig. 4. Deux du navire avec des germes de paille hachurée lignes. Six récipients remplis au 3/1 du volume neproroschennoy paille, marquées par des lignes longitudinales et transversales. À une position prédéterminée de la paille est maintenue dans les inserts 6 navires FIG. 4 ne sont pas représentés. La germination de la paille a été effectuée pendant 10 jours. Après cette période, tous les vaisseaux récupérés à partir des conteneurs de grandes dimensions. Navire 24 utilisé pour inoculer, fructification envoyé à la caméra. Les navires remplis de germes de paille, 1/3 du volume est rempli avec de la paille préparés entièrement et placé dans le support (Fig. 3). Au sommet de chaque clip est placé sur l'un des navires restants de 48 pièces, préparé à l'étape 1. Après 5 jours. lorsque la paille dans la partie inférieure d'un bourgeonnement des vaisseaux adjacents, ces 24 navires sont envoyés à la chambre de fructification. substrat Germination Caged poursuivi pendant 5 jours. Puis, à partir de 144 navires germées à l'étape 2 sélectionné substrat 48 navires et utilisés pour inoculer le cycle de traitement suivant. Tous les navires sont envoyés à la chambre de fructification est placé dans une cage. |
La durée du cycle technologique (Fig. 6) est de 20 jours. et effectuer 12 fois par an. La consommation annuelle de la paille sèche est de 757 kg d'eau pour humidifier et fermentation 6 m 3 hydraté à 70% en 2524 kg de paille, graines grain spawn 2,8 kg. Au cours de l'année, collecté 470 kg de corps de fruits frais de pleurotes.
Le volume annuel de production peut être augmentée jusqu'au niveau souhaité, en présence d'une quantité suffisante d'équipements et d'installations de culture.
Dans le 3ème, les cycles technologiques 6e et 9e plus paille inoculée écrasé corps de fruit de pleurotes. Pour le fond 48 du récipient lors de l'exécution de la deuxième étape (6) ont été placés sur 50 g de sporophores. Ils sont ensuite remplis avec 1/3 volume de paille préparé. Au total, une inoculation supplémentaire dépensé 7,2 kg de corps de fruit.
Nombre de mycélium de semences requis par une méthode connue de inoculer 2524 kg de paille humide, calculées à partir du débit de 5 parties en poids mycélium de semences pour 100 parties en poids substrat mouillé [7]
Une comparaison de la méthode proposée avec le prototype [12] par le temps nécessaire à la colonisation de l'huître volume donné du substrat a été réalisée sur la base d'hypothèses que la figure de l'art antérieur ne sont pas représentés. Supposons que la première paille bourgeonnement des portions de la méthode proposée est réalisée dans 6 récipients de culture, placé dans un grand récipient, avec deux récipients contenant le substrat pré-germées (fig. 4). paille bourgeonnement deuxième portion est réalisée après mise en place des récipients dans le support (fig. 3). Dimensions des récipients de culture, de grands conteneurs et les porteurs prennent les mêmes que dans l'exemple décrit ci-dessus. Comme il est indiqué dans la paille par exemple de germination entièrement récipients de culture prend 20 jours. volume interne complète des six navires de la paille est occupée 17 dm3. Si l' on néglige l'épaisseur de la paroi du récipient pour recevoir la paille 17 dm3 besoin de la grande cylindrée ayant une taille de 260 mm des bords. A la vitesse de propagation du front de 5 mm par jour mycélien pour la germination 17 dm3 paille requis 52 jours. Le gain de temps lorsque le substrat est causée par la colonisation du fait que, dans le procédé proposé de mycélium inoculum est distribué dans de multiples directions, comme dans l'art antérieur dans la même direction.
De plus, en comparaison avec d'autres méthodes de méthode ostréiculture non stérile proposée est pas inférieur au rendement, enregistre des semences et simplifie l'organisation de la production, car elle ne nécessite pas l'achat ou la divulgation de "savoir-faire" l'application bénomyl et de drogue "Custos".
Livres d'occasion
im Pleurotus-anbau 1. Gramss G. Das. Der Champignon 1977, N 192, s. 18-29.
2. Heltay I. Austernpilzproduktion dans grosstechnischem Masstab unter Anwendung moderner Techniken und biotechnologischen Verfahrens. Der Champignon 1985, N 88, s. 20-40.
3. AS 561489 URSS. La méthode de préparation du milieu nourricier de matériaux cellulosiques pour la culture des champignons.
4. AS 1427610 URSS. Le substrat pour la culture de champignons du genre Pleurotus et son procédé de fabrication.
5. Medvedev VA pleurotes. La technologie de plus en plus. M. 1993, p. 28.
6. SCHIES U. und J. Lilley Untersuchungen zur Entwicklung der Mikroorganismenpopulation im Verlauf der semianaeroben Fermtntation. Der Champignon, 1989, N 330, s.14-25.
7. Muller J. Anbauverhalten von Austernpilzstammen auf semi-anaerob fermentierten Erbsenstroch. Der Champignon, 1991, N 361, s.35-43.
8. Harris B. Growing Shiitake commercialement. Un manuel pratique pour la production de champignons forestiers japonais. Sciences techn. piblishers. Madison, Wisconsin USA, 1986, 72 p.
9. Application N 0075614 OEB. La méthode de production sélective des organes de fructification et mycélium de Basidiomycètes, l'utilisation mycétomes et appareils pour la mise en œuvre de la méthode. Inventions en URSS et à l'étranger, 1984, 1, 3, p. 20.
Format pe saport percilor Pleurotus florida 10. Stanculescu B. din Cultura PAIE de sourire sivrejide Mazare. Producta vegetata Horticultura, 1986, N 5, 12-13.
11. Application N 48-39540 Japon. Un procédé de croissance basidiomycètes milieu solide. Inventions en URSS et à l'étranger, en 1974, 1, 15, p. 88.
12. Demande N 2-11207 Japon. La méthode de culture de champignons comestibles. - Inventions pays, 1991, 1, 2, p. 44.
13. Stolzer S. und Grabbe K. Massnahmer zur Verhinderung des Schimmelpilzbefalls im Pleurotusanbau auf Weizenstroch. Der Champignon, Avril 1991, art.20.
REVENDICATIONS
Le procédé de culture de pleurotes consistant à préparer un substrat nutritif, le remplissage substrat nutritif récipients de culture avec des parois perforées, le placement denses récipients de culture dans de grandes cuves, inoculer le substrat à l'égard des récipients de culture, le substrat de germination et de récupération des récipients de culture de grande capacité, caractérisé en ce que le remplissage des récipients de culture substrat nutritif est effectuée en plusieurs étapes, des récipients de culture dans un grand récipient est placé de telle sorte que le substrat neproroschenny mycélien dans chacun des récipients de culture avait été en contact avec le substrat pré-germées dans un autre récipient, la culture est poursuivie jusqu'à ce que le substrat de germination mycélium dans tous les récipients de culture, après quoi le substrat nutritif est rempli de récipients de culture vers le haut le volume total, est maintenu dans une large capacité d'un substrat à germer, et après le retrait de la partie de grande capacité est envoyée à la chambre des récipients de culture de la fructification et une partie enlevée pour être utilisé comme semence dans le cycle de traitement suivant.
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Date de publication 11.03.2007gg
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