invention
Fédération de Russie Patent RU2249433

Procédé pour diagnostiquer une pancréatite chronique développent sur le fond ulcère duodénal

Procédé pour diagnostiquer une pancréatite chronique, à l'exception
LE CONTEXTE ulcère duodénal

Nom de l'inventeur: Kokueva OV (RU); Romanov JL (RU); Mihayloshina EV (RU); Cymbalyuk YM
Le nom du titulaire du brevet: Centre Rossysky Fonctionnelle Surgical Gastroenterology (RU); Kokueva Olga (RU); Jeanne L. Romanova (RU); Mihayloshina Elena (RU); Cymbalyuk Yuri Mikhailovich
Adresse de correspondance: 350063, Krasnodar, ul. Sedin, 4, RTSFHG, Head. Département des brevets TA Doroninoj
Date de début du brevet: 15.04.2002

L'invention concerne la médecine, notamment pour la gastro-entérologie. La méthode permet d'améliorer la précision du diagnostic de la pancréatite chronique qui se développe sur le fond de l'ulcère duodénal, et en outre, il est facile à réaliser. Exécuter les signes cliniques et les niveaux d'enzymes pancréatiques dans le sang, tandis que les enzymes sériques normaux de pancréatite chronique est diagnostiqué en déterminant en outre l'écart par rapport à la teneur normale de leurs niveaux après 5 fois imunofana patient par voie intramusculaire et caractéristique des changements de l'état immunitaire du patient.

DESCRIPTION DE L'INVENTION

L'invention concerne la médecine, en particulier pour l' immunologie et de la gastro - entérologie et peut trouver une application dans le diagnostic de la pancréatite chronique (CP).

L'analyse statistique montre que l'ulcère duodénal (ulcère duodénal) souffrent environ 10% de la population dans le monde. Long, bien sûr souvent récurrente de l'ulcère duodénal dans 63-100% des cas, conduit à des changements irréversibles dans la structure et la fonction pancréatique, contribuant au développement du CP secondaire (Sukhov NA, 1992, Kokueva OV, 1998). L'échec du pancréas est médiée par des cellules du système immunitaire à la suite de l'épuisement des réserves de la réponse immunitaire et la dégradation de la tolérance immunologique chez les patients présentant un ulcère duodénal. Développer sur le fond de la pancréatite chronique ulcère duodénal produit un nouveau symptôme, et en changeant la pondération pour la maladie sous-jacente. Pour éviter le développement de CP chez les patients présentant un ulcère duodénal peut à diagnostiquer à un stade précoce, bien avant la manifestation de troubles fonctionnels.

Dans le diagnostic du CP joue un rôle important révélant hyperenzymemia, qui a été étudiée par la détermination quantitative de la lipase dans le sang de l'amylase sérique, la trypsine (Référence "Technologie de laboratoire médical», Saint-Pétersbourg, 1999, Volume 2, str.19-20 39-, ... 41, 20-21, les méthodes biochimiques d'investigation dans la clinique de Moscou, 1969, str.186-191, Boger 206-208 MM, les méthodes de recherche pancréas, Novosibirsk: Nauka, 1982, str.80-94) .

Dans la pratique clinique souvent examiné l'activité d'amylase, puisqu'il y a un substrat spécifique, et la détermination de ses méthodes compliquées pour cette enzyme. Il existe trois principaux groupes de méthodes d'amylase dans biologique étude des fluides:

1) reduktometricheskie sur la base de la détermination de l'amidon produit à partir de sucres;

2) amiloklasticheskie sur la base de la détermination de la quantité de non-clivage de l'amidon par réaction avec l'iode;

3) hromoliticheskie basée sur l'utilisation des complexes colorant-substrat qui se décomposent sous l'action de l'amylase pour former un colorant soluble dans l'eau.

L'activité lipase a été déterminée dans la plupart des méthodes titrimétriques basées sur la détermination de la quantité de l'acide gras libéré par l'action de l'enzyme. Ces méthodes diffèrent dans le substrat utilisé: l'huile d'olive, Tween, terbutirin. La méthode photométrique pour la détermination de lipase associée à l'introduction du réactif de réaction particulière. Tel qu'il est utilisé méthode turbidimétrique unifié dans lequel l'huile utilisée comme substrat d'olive.

La trypsine a été déterminée dans le sérum en enquêtant sur son activité Erlanger et al. modification VA Shornikova. La méthode est basée sur le clivage avec la trypsine substrat synthétique incolore benzoilarginin-p-nitroanilide formant couleur p-nitroaniline, dont le nombre est déterminé kalibrimetricheski.

Cependant, l'activité des enzymes pancréatiques dans le sang est souvent difficile de juger de la présence et de la gravité de la PC, parce que la maladie associée à l'ulcère duodénal est souvent accompagnée d'une augmentation de l'activité des enzymes. Dans ces cas, les méthodes utilisées ont aucune valeur significative et HP peuvent être non diagnostiqués dans le temps, ce qui entraînera la progression des processus inflammatoires et dégénératives dans le pancréas avec la violation de son activité fonctionnelle, la manifestation de la maladie et les complications dues à l'absence de traitement pathogénique en temps opportun.

En tant que filiale de la méthode utilisée pour identifier l'étude immunologique HP du sang périphérique. des méthodes immunologiques appliquées sont divisés en 3 groupes (Velbri SK Immunological diagnostic des maladies pancréatiques, M., 1985):

1) Détermination des tissus normaux et les antigènes modifiés de composants individuels et les composants sanguins dans les fluides du pancréas et du corps comme indication de détérioration ou d'un trouble du pancréas;

2) la détermination d'anticorps ou de lymphocytes sensibilisés contre les antigènes du pancréas ou de ses composants individuels, les complexes antigène-anticorps comme indicateurs de la réponse immunitaire. Ces indicateurs peuvent être des critères de diagnostic de la maladie;

3) la détermination des paramètres immunologiques, ne pointe pas directement à l'échec du pancréas, mais caractérisant l'état du système immunitaire dans son ensemble, le degré de réactivité que la capacité du corps à résister au développement du processus pathologique principal et sa résistance à des complications.

L'important est le fait que lorsque le niveau de PK des enzymes pancréatiques dans le sang et dans l'urine augmente généralement après normalisation et avant que l'antigène du pancréas disparaît du sang. Par conséquent, l'identification de celui-ci dans le sérum sanguin est une méthode très spécifique pour le diagnostic de CP. Mais lorsqu'il est combiné avec HP UDD performance de la méthode peut être insatisfaisante parce antigène du pancréas chez ces patients détectés dans seulement 1 des 7 cas. anticorps Disponibilité antipankreaticheskih est pas spécifique à HP, parce ils peuvent circuler dans le sang pour le cancer, la fibrose kystique du pancréas et absent chez CP sévère et réduit la réactivité du patient, ce qui réduit naturellement leur valeur diagnostique.

Dans cet article, nous avons utilisé une étude exhaustive de l'état immunitaire d'une évaluation de niveau II de l'état de cellulaire, humorale, parties phagocytaires du système immunitaire.

Matériau d'essai: le sang veineux périphérique. sang Prenant est produit dans des conditions aseptiques à partir d'une veine dans les coudes des tubes siliconés stériles. Dans l'un d'entre eux pré-fabriqué par le calcul de la solution d'héparine 10 U / ml de sang, puis 5 ml de sang veineux. Dans un autre (sec) faire flacon de 3 ml de sang.

Évaluation du composant cellulaire produite par l'utilisation d'anticorps monoclonaux contre CD3, CD4, CD8, CD16-, des récepteurs CD19 des lymphocytes.

Progrès dans la recherche

sang héparinisé a été mélangé dans un rapport volumique de 2: 1 avec une solution de gélatine à 3% sur le support 199, est mélangé et placé pendant 20-25 minutes dans un thermostat à + 37 ° C Après l'épluchage de la couche supérieure transférée avec précaution pipette Pasteur dans des tubes de centrifugeuse et centrifugée pendant 10 minutes à 1000 tr / min au froid. Pour enlever le culot globulaire est remis en suspension dans 1 ml d'un tampon hémolytiques 1 ml ou 0,5 ml d'eau distillée (20 à 30 secondes de temps d'exposition), suivie d'une dilution de 20 fois le volume de tampon phosphate salin (PBS). Les cellules ont été sédimentées par centrifugation à 400 à 430 tr / min pendant 20 minutes dans le froid et recueilli dans l'interphase contenant les lymphocytes, à l'aide d'une pipette Pasteur. La suspension de lymphocytes résultant a été lavé trois fois dans du PBS.

Les lymphocytes isolés ont été remises en suspension dans le volume requis de PBS, en les amenant jusqu'à une concentration de 1 à 2 millions / ml et on introduit 100 ml de suspensions de cellules en forme de U plaque à 96 puits. Les plaques ont été centrifugées à froid pendant 2 minutes à 1000 tr / min, le surnageant a été retiré et le culot a été remis en suspension dans 100 ul de dilutions d'anticorps monoclonaux à la solution désirée isotonique tamponnée au phosphate avec 0,5% de sérum albumine bovine et de l'azoture de sodium à 0,02%. Les cellules ont été incubées avec des anticorps à 4 ° C pendant 30 minutes avec agitation douce occasionnelle. Après l'expiration des cellules d'incubation, on centrifuge à 4 ° C pendant 2 minutes, le culot a été remis en suspension dans 150-200 ul de PBS ou de support 199 est déposé, le lavage des réextrait.

Les échantillons fixés obtenus ont été analysés au microscope sous lumière ultraviolette. Pour évaluer les résultats de la réaction avec une fiabilité suffisante pour compter les cellules au moins 200-300 dans chaque échantillon.

norme physiologique de la teneur relative des lymphocytes prélevés au laboratoire:

- 54-77% CD3;

- 35 à 50% CD4-;

- 18 à 25% CD8;

- 5-15% CD16-;

- 3-13% CD19.

des classes d'immunoglobulines A titre, F, G calculée mathématiquement sur la base des données de la immunodiffusion radiale selon la méthode de Mancini gel d'agar.

Progrès dans la recherche

A une température de 55-56 ° C est mélangé avec de l'agar antisérum approprié dans un rapport de 3: 1. Rapidement le mélange a été versé dans une boîte de Pétri en verre, couché sur une table horizontale. Après solidification de la gélose stenciled y poinçonner gaufrage 33 puits, chaque puits Pasteur pipette 5 ml de sérum d'essai dans le milieu a été ajouté à quatre puits d'une dilution 4 fois de sérum de test avec des immunoglobulines connues. Les plaques placées dans un environnement humide dans une position strictement horizontale pendant 24-48 heures à 4 ° C (et pour JGA JGG - 24 heures pour JGM - 48 heures). Après 24-48 heures, la réaction en compte. Avec anneau illumination de précipitation oblique devient visible et mesurée par une règle. Diamètre des anneaux autour des puits avec le test de courbe d'étalonnage de sérum sur papier semi-logarithmique. Lors de la construction de prendre en compte le fait que, dans une certaine gamme de concentrations d'immunoglobulines diamètre de l'anneau est directement proportionnel au logarithme de la concentration en immunoglobulines.

Après avoir mesuré le diamètre de l'anneau dans les échantillons d'essai à partir de la courbe d'étalonnage estimer la concentration de la classe d'immunoglobulines dans les échantillons d'essai.

Concentration exprimée en mg de protéine ME ou 100 ml (mg%) ou g / L (système SI).

Physiologiquement teneur en immunoglobuline normale:

- JGA - 0,7-3,0 g / l;

- Jgg - 8,0-16,0 g / l;

- JGM - 0,8-2,5 g / l.

Le niveau de la fraction sérique total de complexes immuns circulants (CIC) a été évaluée par précipitation à l'aide d'une solution de 3,5% de polyéthylène glycol (PEG).

Matériel et équipement:

- Une solution isotonique de chlorure de sodium;

- Solution à 7% de PEG;

- 0,1N. une solution d'hydroxyde de sodium;

- Centrifugeuse;

- Spectrophotomètre;

- Tubes à centrifuger;

- Pipette 1 ml et 5 ml.

Réactifs.

solution à 7% PEG 7 g de PEG dissous 100 ml de tampon borate (pH 8,4). Le tampon de borate a été préparé en mélangeant 55 ml de solution d'acide borique à 1,24%, et 1,9 ml de solution à 45% de borax a été ajusté à 200 ml avec de l'eau distillée. une solution de PEG à 3,5%: 20 ml de solution de PEG à 7% et de 20 ml de tampon borate. 0,1N. une solution d'hydroxyde de sodium NaOH 4 g dilués dans 1 ml d'eau distillée.

Procédé de fabrication

Le sérum a été dilué avec une solution de chlorure de sodium isotonique dans un rapport de 1:25 (0,1 ml + 2,5 ml). Le sérum dilué a été mélangé avec une solution de PEG à 7% dans un rapport de 1: 1 (0,5 ml + 0,5 ml). Pour mettre en oeuvre les tubes de réaction de précipitation placés dans un réfrigérateur à 4 ° C pendant 18 heures. Les tubes ont été centrifugés pendant 15 minutes à 1500 tr / min et le surnageant a été retiré. Ensuite, le précipité a été dissous dans 2,5 ml de 0,1N. une solution de NaOH, on a agité soigneusement et laissé à température ambiante pendant au moins 30 minutes. Les échantillons sont mesurés avec un spectrophotomètre, longueur d'onde de 280 nm par rapport à 0,1N. une solution de NaOH. CEC niveaux exprimés en unités de densité optique. niveau CEC déterminé par précipitation de solution à 3,5% de PEG, normalement ne pas dépasser 0,110 unités de densité optique.

activité Absorbant de neutrophiles et de l'exhaustivité de la phagocytose a été examiné par réaction avec la culture vibrante de Staphylococcus aureus (souche 209).

Progrès dans la recherche

goutte de sang veineux dans la quantité de 0,1 ml est placé sur un skim nettoyer le couvercle en verre. Son maintenus dans une chambre humide à 37 ° C pendant 45 minutes, après quoi le caillot a été soigneusement retiré avec une pince. Le verre de couverture avec des neutrophiles fixés ont été lavés dans une solution de Hanks, provoquant la dose Staf culture quotidienne calculée. aureus et à nouveau placé dans une chambre humide à 37 ° C pendant 30 minutes. Après incubation, la lame est lavée dans une solution de Hanks pour éliminer les particules non absorbée et on le sèche. La correction et la drogue séchée peinture Romanovsky-Giemsa.

Comptabilisation activité phagocytaire est effectuée en déterminant le pourcentage de neutrophiles avec du matériel phagocytaire - Numéro phagocytaire - et le nombre de particules absorbées par un neutrophiles - indice phagocytaire. Dans chaque préparation ont été comptés au moins 200 cellules. normes physiologiques pour le laboratoire:

- L'activité Absorbant - 50-70%;

- Numéro phagocytaire - 2,2-4,3;

- Indice phagocytaire - 1,4-2,5;

- L'activité digestive - 70-94%;

- Indice de Digestion - 1,3-2,0.

En vue du diagnostic des niveaux d'enzymes, nous avons utilisé:

I. La détermination spectrophotométrique de la variation de la turbidité de l'huile d'olive suspension sous l'action de la lipase (référence "Medical Technology Laboratory", Volume 2, Saint-Pétersbourg, 1999, s.39-41).

Le substrat le plus spécifique pour la lipase est triomin (huile d'olive).

Détermination de l'activité de la lipase Tietze.

Sous l'influence de l'huile d'olive lipase est divisée en acides gras, qui sont titrés avec un alcali. Selon le nombre qui est allé à la titration de l'alcali jugé sur l'activité de la lipase.

Réactifs:

1. Emulsion d'huile d'olive: 93 ml d'eau distillée; 0,2 g de benzoate de sodium et 7 ml de gomme arabique ont été bien mélangés. A ce mélange, on ajoute 93 mg d'huile d'olive (lentement). Ensuite, le mélange est émulsionné pendant 10-15 minutes au début à des vitesses faibles et élevées.

2. Tris 0,2 M pH 8,0 Tampon: 0,4 ml d'une solution de Tris 50 gidroksimetilaminometana (48,4 g / l) a été mélangé avec 26,8 ml de 0,4 n. l'acide chlorhydrique et le volume a été ajusté à 100 ml avec de l'eau distillée.

On a dissous 1 g de thymolphtaléine dans 100 ml d'éthanol: 3. Indicateur.

4. 0,05 n. une solution d'hydroxyde de sodium ne contenant pas de carbonates, titrés jusqu'à ce que la couleur bleue. La différence dans la quantité de 0,05N. hydroxyde de sodium consommé sur l'expérience et le contrôle de l'activité de la lipase dans les unités Tietz.

tableau 1
cours d'étude expérience contrôle
tampon 1.0 1.0
émulsion d'huile d'olive 0,5 0,5
l'eau distillée 2.5 2.5
sérum sanguin 1.0 -
mélange, puis mis à incuber dans une étuve pendant 2 heures à 37 ° C
pour transférer le contenu de tous les tubes dans l'erlenmeyer de 50 ml
éthanol 3.0 3.0
sérum sanguin - 1.0
solution à 1% de la thymolphtaléine 4 gouttes 4 gouttes
Titrage de 0,05 N. l'hydroxyde de sodium

II. La détermination du niveau de la méthode photométrique trypsine. La méthode est basée sur la capacité de la trypsine pour hydrolyser le substrat chromogénique N- a-L-arginine-4-nitroanilide -tozil. Le 4-nitroanilide résultant est déterminé par photométrie.

Détermination de l'activité de la trypsine-Heverbeku Erlanger.

Équipement:

- Spectrophotomètre, thermostat. réactifs de base:

- Tris;

- Le chlorure de calcium;

- Diméthylformamide;

- 0001 BC. l'acide chlorhydrique;

- 0,1 yM nitroaniline: 13,8 g nitroaniline dilué dans 1 litre d'eau distillée;

- Le chlorure de potassium 0,14 N;.

- Benzoyl-arginine-p-nitroaniline (BAPNA);

- Acide acétique, solution à 30%.

Les solutions de travail:

1. Tris 0,2 M, tampon pH 7,8: 24,23 g de Tris et 3,67 g de chlorure de calcium dilués dans 800 ml d'eau distillée, le pH ajusté à 7,8 à l'aide 2N. une solution d'acide chlorhydrique. Ensuite, on ajuste le volume à 1000 ml avec de l'eau distillée.

2. La solution de substrat (20 mg%) 2 mg de BAPNA dissous en chauffant doucement dans 0,1 ml de diméthylformamide, puis on ajoute à 10 ml de tampon Tris.

3. 30% d'une solution d'acide acétique.

Le sérum a été dilué à 1: 2 0,14 n. une solution de chlorure de sodium. La densité optique du liquide est déterminée avec un spectrophotomètre à une longueur d'onde de 410 nm.

Pour calculer la concentration de p-nitroaniline suit la construction d'une courbe d'étalonnage. Une unité d'activité de la trypsine est définie de telle activité dans laquelle 1 mM de substrat clivé par minute. l'activité de la trypsine est déterminée par la différence de concentration de test et de contrôle des tubes de para-nitroaniline. Compte tenu du temps d'incubation et la dilution de l'activité de la trypsine dans le sérum sanguin est calculé selon la formule suivante:

Eo - l'extinction de l'expérience;

Ek - commande d'extinction;

A - facteur de densité optique obtenue en divisant la concentration du sang dans les tubes de la courbe d'étalonnage pour l'absorbance.

tableau 2
cours d'étude expérience contrôle
une dilution sérique 0,5 0,5
substrat 4.0 4.0
l'acide acétique - 1
termostirovanie 30 minutes à 37 ° C,
l'acide acétique 1 -
photométrie

Chez les personnes en bonne santé, l'activité de la trypsine dans le sang est dans la gamme 0-4 Med. / Ml.

III. Pour étudier l'activité de l'amylase comme un prototype, nous avons utilisé une méthode standardisée amiloklastichesky avec résistant substrat d'amidon (méthode Karaveya) (Référence "Technologie de laboratoire médical», Saint-Pétersbourg, 1999, Volume 2, s.20-21). Le principe de la méthode est que l'amylase de fendage hydrolysant l'amidon pour former le produit final ne donne pas une réaction colorée avec de l'iode. L'activité du juge de l'amylase pour réduire l'intensité des couleurs.

Équipement:

- Fotoelektrokolorimert bain d'eau.

Réactifs:

solution d'amidon 1. 2%: à 1 ml d'eau distillée froide, on a ajouté 200 mg d'amidon, remuer, puis complété avec 7,6 ml d'eau distillée chaude et placé dans un bain d'eau bouillante jusqu'à dissolution. Ensuite, le volume a été ajusté avec de l'eau distillée jusqu'à 10 ml. Le substrat doit être transparent.

2. Le tampon phosphate salin pH 7,1. Pour la préparer , on a mélangé 7,62 g de dihydrogénophosphate de potassium (KP 2 PO 4) et 20,45 g de phosphate disodique (Na 2 HPO 4), le volume a été ajusté avec de l' eau distillée jusqu'à 1000 ml.

3. Solution de 3% de chlorure de sodium.

4. 0,1N. une solution d'iode: on introduit 3 g d'iodure de potassium dans 2,5 ml d'eau distillée, 1,2 g d'iode et le volume cristallin ajusté avec de l'eau distillée jusqu'à 10 ml.

5. 1N. une solution d'acide chlorhydrique.

tableau 3
cours d'étude expérience contrôle
solution d'amidon 5 5
tampon 3 3
une solution saline 1 1
mélangés et chauffés pendant 10 minutes à 37 ° C,
sérum sanguin 1 1
1N. acide chlorhydrique - 2
thermostaté et mélanger pendant 30 minutes à 37 ° C
1N. acide chlorhydrique 2 -
0,2 ml de chaque essai et de contrôle dans un flacon avec une solution d'iode ont été mélangées
photométrie

Pour préparer la solution de travail dans le flacon d'iode est faite de 50 ml avec 40 ml d'eau distillée, 0,5 ml de 1N. une solution d'acide chlorhydrique 0,1 N et. une solution d'iode. Nombre de flacons doit correspondre au nombre de tubes ayant une expérience et de contrôle. Photométrie est effectuée dans la cuvette de 1 ml avec un filtre rouge (longueur d'onde 630-69 NMC) contre l'eau.

Ek - commande d'extinction;

Eo - l'extinction de l'expérience;

A - facteur de densité optique obtenue en divisant la concentration du sang dans les tubes de la courbe d'étalonnage pour l'absorbance. Ce facteur correspond à la concentration de para-nitroaniline correspondante de la densité optique.

une activité d'amylase de l'unité correspondant à 10 mg d'amidon digéré a fourni une incubation pendant 30 minutes à 37 ° C, Normalement, l'activité d'amylase dans le sérum sanguin est 80-120 unités.

Le principal inconvénient des méthodes utilisées dans l'étude de l'enzyme conclu leur faible teneur de l'information chez les patients présentant un ulcère duodénal compliqué par HP, lorsque le niveau de l'enzyme correspond à la plage normale.

Objet de l'invention est d'améliorer la précision et la rapidité du diagnostic du CP qui a développé sur le fond de l'ulcère duodénal.

L'essence de l'invention est que, avec une enzyme pancréatique normale périphérique HP sanguin diagnostiqué en déterminant en outre la déviation du niveau des valeurs et des paramètres de changements caractéristiques du patient physiologique après cinq fois immunogramme intramusculaire préparation immunotropique patient imunofana 0,005% à 1 ml d'une journée.

Le processus est le suivant. Un patient souffrant de l'ulcère duodénal, d'identifier les plaintes spécifiques de la douleur dans le quadrant supérieur gauche, douleur épigastrique, irradiant vers l'arrière, la perte de poids, selles instable, des nausées. Examen Objectif révèle la tendresse dans la zone pancreatoduodenal, symptômes positifs Mayo-Robson et Kacha. Produire étude instrumentale, ce qui confirme la présence de l'ulcère duodénal et les caractéristiques HP: esophagogastroduodenoscopy, l'examen par ultrasons. exercer des échantillons de sang provenant des veines malades et déterminer le niveau de l'amylase, la lipase et la trypsine, effectuer une étude exhaustive de l'état immunitaire. Lorsque les données d'analyse du sang périphérique pour hyperfermentemia reçus, les indicateurs de l'état immunitaire correspondent à des valeurs physiologiques, les symptômes c.-à-HP diagnostic aiguë ont été identifiés. Le patient est administrée imunofan 0,005% à 1 ml par jour par voie intramusculaire № 5. Le médicament a un effet immunostimulant capable dans les 2-3 premiers jours après l'injection et pour augmenter la production d'anticorps par capacité élevée d'opsonisation de sérum pour stimuler neutrophiles phagocytaires. Les patients atteints de maladies auto-immunes, quel que soit le procédé de l'activité de l'administration du médicament entraîne une aggravation transitoire de l'inflammation immunitaire. Après 3-4 jours, les patients re-prendre le sang d'une veine périphérique pour étudier les niveaux d'enzymes et de l'évaluation globale de la dynamique de l'état immunitaire. En identifiant hyperenzymemia rapport à la norme et giposupressornogo type de système immunitaire (les sous-populations de déséquilibre de lymphocytes T avec une prévalence de cellules contenu auxiliaires, la pénurie de CD3 et CD8 et augmentation de l'indice immunorégulateur; hyperimmuns toutes les classes majeures ou individuelles des immunoglobulines et une augmentation des complexes immuns circulants, l'épuisement activité fonctionnelle des phagocytes et phagocytose incomplète) sont diagnostiqués avec le CP, qui a développé sur le fond de l'ulcère duodénal.

exemple 1

Patient S., numéro de dossier médical 4731.

Il a reçu gastroentérologie département de médecine de l'Hôpital régional de Krasnodar plaintes de douleurs épigastriques, nausées après avoir mangé, faiblesse.

De l'histoire: UDD malade depuis environ 20 ans.

Objectivement à l'admission: douleurs à l'estomac à la palpation dans le épigastriques, tant l'hypocondrie, dans le cadre de la projection du pancréas, les symptômes positifs de la Mayo-Robson et Kacha.

Lorsque les études instrumentales et de laboratoire ont été identifiés: le esophagogastroduodenoscopy bulbe duodénal déformation esogastritis cicatriciel-peptique, bulbit; signes indirects de la zone panktreato-biliaire pathologie (départements postbulbarnyh muqueuses avec telelimfoangioektaziyami).

L'examen échographique: taille du pancréas dans la plage normale, les contours de son rugueux, ECHO généité amélioré la structure non uniforme diffuse. Conclusion: Les signes échographiques de CP.

Dans l'étude de l'activité enzymatique des indicateurs du pancréas ne vont pas au-delà de la limite supérieure de la normale.

Dans le déficit modéré des lymphocytes T immunologique due à des lymphocytes CD4, la dépression activité d'absorption des neutrophiles. Le contenu des immunoglobulines et CEC - dans la plage normale.

patiente a produit cinq fois l'administration intramusculaire d'1 ml de solution à 0,005% imunofana par jour. 3 jours après la dernière administration de l'amylase, la lipase et la trypsine ont été examinés à nouveau immunogramme. Les indicateurs exprimés dans les figures suivantes, par rapport aux données d'origine.

tableau 4
étudié la valeur de niveau initial après l'introduction du niveau de imunofana
amylase 25,0 g de l / h 35,9 g, l / h
trypsine 175,4 mmol / l 290 mmol / l
lipase 1,2 unités. 1,8 unités.
Les lymphocytes CD3 52% 49%
lymphocytes CD4 28% 35%
Les lymphocytes CD8 20% 14%
iga 0,6 mg / ml 0,9 mg / ml
igm 1,2 mg / ml 2,8 mg / ml
immunoglobuline G 9,3 mg / ml 20 mg / ml
CCE 0,06 ed.opt.pl. 0201 ed.opt.pl.
% phagocytose 43% 54%
% digestion 69% 51%

Les données ont permis de mettre un diagnostic clinique: HP, forme douloureuse, récidivantes cours de la phase aiguë.

déformation Rubtsovo-peptique duodénal ampoule, gastrite, bulbit.

L'étude a confirmé que l'adhésion à HP dans un ulcère duodénal, et a permis de procéder à la thérapie pathogénique adéquate.

exemple 2

Patient M., numéro de l'histoire médicale 1625.

Reçu gastroentérologie département de médecine de l'Hôpital régional de Krasnodar plaintes de douleurs épigastriques, quadrant supérieur gauche, irradiant vers l'arrière, portant paroxystique dans la nature, les brûlures d'estomac, perte de poids de 6 kg sur 2 mois.

De l'histoire: souffrant d'ulcère duodénal depuis 10 ans. À plusieurs reprises traité dans un hôpital. Hospitalisé dans une clinique avec un diagnostic de l'ulcère duodénal dans le processus d'évanouissement exacerbation.

Les données objectives sur l'admission: estomac douloureux zone pancréatique-duodénale épigastrique, la palpation des symptômes positifs Mayo-Robson et Kacha.

L'examen a révélé les anomalies suivantes: sur esophagogastroduodenoscopy bulbe duodénal difformité de cicatrice-peptique, papillite chronique.

Sur hétérogène des données d'ultrasons, de la structure du pancréas hyperéchogène. Conclusion: Les signes échographiques de CP.

Le contenu des enzymes pancréatiques - dans la plage normale.

Dans les sous-populations de déséquilibre immunologique de lymphocytes T avec une prédominance de suppresseur, l'indice de réduction de suppresseur hyperimmuns Une augmentation modérée de l'activité d'absorption des neutrophiles et le contenu de la CCE.

Le patient a été administré par voie intramusculaire cinq fois 0,005% solution imunofana 1 ml par jour. Après 4 jours de recherche répétée produit du sang périphérique.

Les données obtenues sont présentées dans le tableau 5.

REVENDICATIONS

Procédé pour diagnostiquer une pancréatite chronique qui se développe sur le fond de l'ulcère duodénal, consistant à déterminer les signes cliniques et les niveaux d'enzymes pancréatiques dans le sang, caractérisé en ce que les enzymes sériques normaux de pancréatite chronique est diagnostiqué en déterminant en outre l'écart par rapport à la teneur normale de leurs niveaux après 5 imunofana -fold injection intramusculaire pour le patient et les changements de caractéristiques de l'état immunitaire du patient.

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Date de publication 29.03.2007gg